ВЛИЯНИЕ АНТИБАКТЕРИАЛЬНЫХ ФАКТОРОВ НА СМЕШАННУЮ КУЛЬТУРУ ESCHERIСHIA COLI И STAPHYLOCOCCUS EPIDERMIDIS В УСЛОВИЯХ ПОВЫШЕННОГО ОСМОТИЧЕСКОГО ДАВЛЕНИЯ

Article Sidebar

PDF (Русский)
Published: Aug 3, 2020

Main Article Content

Ирина Валерьевна Елтышева
ФГКОУ «Пермское суворовское военное училище Министерства обороны РФ»
http://orcid.org/0000-0001-8054-438X
Лев Евгеньевич Затворницкий
ФГКОУ «Пермское суворовское военное училище Министерства обороны РФ»
http://orcid.org/0000-0001-8960-2494
Ирина Леонидовна Масленникова
Институт экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН − филиал ФГБУН ПФИЦ УрО РАН
http://orcid.org/0000-0002-2776-8023

Abstract

Комменсальные штаммы кишечника человека Escherichia coli K12 и кожи Staphylococcus epidermidis нередко встречаются в одних и тех же атипичных биотопах, где они могут выступать инфекционными агентами. Цель работы – изучение эффективности действия хлорамфеникола, цефтриаксона, пиобактериофага поливалентного и хлоргексидина на моновидовые и смешанные культуры условно-патогенных микроорганизмов E. coli К12 и S. еpidermidis на фоне 2%-ного NaCl. Показано, что эффект цефтриаксона и хлорамфеникола, с антибактериальными свойствами только в отношении E. coli, нивелировался в условиях повышенного осмотического давления в концентрациях 12‒200 мг/л в смешанной культуре. Для E. coli К12 отмечено снижение эффективности действия бактериофага при высоком осмотическом давлении, что является противоположным по отношению к S. еpidermidis. Что касается хлоргексидина, то в условиях 2%-ного NaCl его действие на E. coli K12 и S. epidermidis усиливалось в моновидовых и смешанных культурах. В целом, повышение осмотического давления среды выступало синергистом ингибирования роста бактерий антибиотиками и бактериостатиком.

Article Details

How to Cite
Елтышева, И. В., Затворницкий, Л. Е., & Масленникова, И. Л. (2020). ВЛИЯНИЕ АНТИБАКТЕРИАЛЬНЫХ ФАКТОРОВ НА СМЕШАННУЮ КУЛЬТУРУ ESCHERIСHIA COLI И STAPHYLOCOCCUS EPIDERMIDIS В УСЛОВИЯХ ПОВЫШЕННОГО ОСМОТИЧЕСКОГО ДАВЛЕНИЯ. Bulletin of Perm University. Biology, (1), 19–25. Retrieved from https://press.psu.ru/index.php/bio/article/view/3629
Issue
No. 1 (2020): Вестник Пермского университета. Серия Биология. №1. 2020
Section
Микробиология

License agreement

 

Author Biographies

Ирина Валерьевна Елтышева, ФГКОУ «Пермское суворовское военное училище Министерства обороны РФ»

Кандидат биологических наук, преподаватель

Лев Евгеньевич Затворницкий, ФГКОУ «Пермское суворовское военное училище Министерства обороны РФ»

Обучающийся

Ирина Леонидовна Масленникова, Институт экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН − филиал ФГБУН ПФИЦ УрО РАН

Кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории иммунорегуляции

References

Данилов В.С. и др. Сенсорные биолюминесцентные системы на основе lux-оперонов разных видов люминесцентных бактерий // Вестник МГУ. Cер. 16: Биология. 2002. № 3. С. 20–23.

Козлова Ю. и др. Генетическая и биохимическая характеризация стафилококков, встречающихся в Новосибирске // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2017. Т. 21, № 8. С. 952–958.

Пшеничнов Р.А., Масленникова И.Л., Никитина Н.М. Влияние антибактериальных факторов и биостимуляторов клеточного метаболизма на бактериальную люминесценцию // Прикладная биохимия и микробиология. 2003. Т. 39, № 3. С. 307–312.

Фадеева Т.В. и др. Актуальные проблемы госпитальной инфекции: реинфицирование, супер-инфицирование и резистентность возбудителей к антимикробным препаратам // Бюллетень Восточно-Сибирского научного центра СО РАМН. 2006. № 5. С. 298–301.

Akbaş A., Kilinç F. Investigation on aetiological fac-tors in patients with hyperhidrosis // Cutaneous and Ocular Toxicology. 2018. Vol. 37, № 4. P. 344–349.

Assadian O., Humphreys P.N., Ousey K.J. Disinfection of artificially contaminated gloved hands reduces transmission of Staphylococcus epidermidis to catheter valves // Journal of Hospital Infection. 2018. Vol. 100, № 3. P. e57–e59.

Baker L.B. Physiology of sweat gland function: The roles of sweating and sweat composition in human health // Temperature (Austin). 2019. Vol. 6, № 3. P. 211–259.

Chakraborty A. et al. Characterization of Escherichia coli phylogenetic groups associated with extrain-testinal infections in South Indian population // Annals of Medical and Health Sciences Research. 2015. Vol. 5, № 4. P. 241–246.

DiMuzio E.E. et al.Trends in bacterial wound isolates and antimicrobial susceptibility in a pediatric burn hospital // Journal of burn care and research. 2014. Vol. 35, № 5. P. e304–11.

Hendricks A.J. et al. Sweat mechanisms and dysfunctions in atopic dermatitis // Journal of Dermatological Science. 2018. Vol. 89, № 2. P. 105–111.

Hidalgo E., Dominguez C. Mechanisms underlying chlorhexidine-induced cytotoxicity // Toxicology in vitro. 2001. Vol. 15, № 4-5. P. 271–276.

Hinojosa C.A. et al. Impact of the bacteriology of diabetic foot ulcers in limb loss // Wound Repair and Regeneration. 2016. Vol. 24, № 5. P. 923–927.

Jończyk E. et al. The influence of external factors on bacteriophages – review // Folia Microbiologica (Praha). 2011 Vol. 56, № 3. P. 191–200.

McMahon M.A. et al. Environmental stress and antibiotic resistance in food-related pathogens // Applied and Environmental Microbiology. 2007. Vol. 73, № 1. P. 211–217.

Méric G. et al. Disease-associated genotypes of the commensal skin bacterium Staphylococcus epidermidis // Nature communications. 2018. Vol. 9, № 1. P. 5034.

Moet G.J. et al. Contemporary causes of skin and soft tissue infections in North America, Latin America, and Europe: report from the SENTRY Antimi-crobial Surveillance Program (1998–2004) // Diagnostic microbiology and infectious disease. 2007. Vol. 57, № 1. P. 7–13.

Moller A.G., Lindsay J.A., Read T.D. Determinants of phage host range in Staphylococcus species // Applied and environmental microbiology. 2019. Vol. 85, № 11. P: e00209-19.

Oliveira W.F. et al. Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis infections on implants // The Journal of hospital infection. 2018. Vol. 98, № 2. P. 111–117.

Orazi G., O’Toole G.A. «It takes a village»: mechanisms underlying antimicrobial recalcitrance of polymicrobial biofilms // The Journal of bacteriology. 2019. Vol. 202, № 1. P. e00530–19.

Otto M. Staphylococcus epidermidis – the «accidental» pathogen // Nature reviews. Microbiology. 2009. Vol. 7, № 8. P. 555–567.

Rogers K.L., Fey P.D., Rupp M.E. Coagulase-negative staphylococcal infections // Infectious disease clinics of North America. 2009. Vol. 23, № 1. P. 73–98.

Schmidt K. et al. Chlorhexidine antiseptic irrigation eradicates Staphylococcus epidermidis from bio-film: an in vitro study // Clinical orthopedics and related research. 2018. Vol. 476, № 3. P. 648–653.

Shahidi A., Ellner P.D. Effect of mixed cultures on antibiotic susceptibility testing // Applied microbiology. 1969. Vol. 18, № 5. P. 766–770.

Szweda P., Gorczyca G., Tylingo R. Comparison of antimicrobial activity of selected, commercially available wound dressing materials // Journal of wound care. 2018. Vol. 27, № 5. P. 320–326.

Weinbauer M.G. Ecology of prokaryotic viruses // FEMS microbiology reviews. 2004. Vol. 28, № 2. P. 127–181.

Most read articles by the same author(s)