ПОЛУЧЕНИЕ АНТИТОКСИЧЕСКИХ СЫВОРОТОК И ВОЗМОЖНОСТЬ ИХ ПРИМЕНЕНИЯ В ДИАГНОСТИКЕ ХОЛЕРЫ
Main Article Content
Abstract
Article Details
References
Антитела. Методы / под ред. Д. Кэтти. М.: Мир, 1991. Т. 1. 384 с.
Белая А.Ю. и др. Определение холерного энтеротоксина с помощью реакции коагглютинации // Вестник Академии медицинских наук СССР. 1984. № 10. С. 9–73.
Бусыгин К.Ф. Люминесцентная диагностика инфекционных болезней животных. М.: Колос, 1975. 160 с.
Захарова Т.Л. и др. Создание многокомпонентной диагностической иммуноферментной тест-системы для оценки экспрессии основных генов вирулентности и иммуногенности у холерных вибрионов // Биотехнология. 2008. № 2. С. 88–96.
Маркина О.В. и др. GM1-ДОТ-ИФА для выявления токсинопродуцирующих штаммов Vibrio cholerae // Клиническая лабораторная диагно-стика. 2011. № 5. С. 49–52.
Сизова Ю.В. и др. Влияние температуры на токси-нопродукцию холерных вибрионов в речной воде // Здоровье населения и среда обитания. 2016. № 6. С. 54–56.
Скоупс Р. Методы очистки белков. М: Мир, 1978. 74 с.
Способ получения иммуноглобулинового препарата: пат. Рос. Федерация. № RU 2 111 001 C1; заявл. 20. 07.1997.
Тюменцева И.С. и др. Разработка тест-систем магноиммуносорбентных для выявления холерного вибриона в объектах окружающей среды // Здоровье населения и среда обитания. 2014. № 4. С. 17–19.
Федорова В.А. и др. Сравнительное изучение особенностей синтеза и специфичности энтеротоксина Vibrio cholerae O139 серовара с помощью моноклональных антител // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 1996. № 3. С. 3–6.
Фрешни Р.Я. Культура животных клеток: практическое руководство. М.: Лаборатория знаний, 2018. 791 с.
Bhattacharyya S. et al. Role of the W07-toxin on Vibrio cholera-induced diarrhea // Biochim. Biophys. Acta. 2004. Vol. 1670, № 1. P. 69–80.
Crowther J.R. Molecular biology methods. IFA Guide. Humana Press part Springer Science Business Me-dia, 2009.
Hum B.A.L., Chantler S.M. Production of reagent antibodies // Methods Enzymol. 1980. Vol. 70. P. 104–142.
McCardell B.A. et al. Identification of a CHO-elongating factor produced by Vibrio cholera O1 // Microbial Pathoenesis. 2000. Vol. 29, № 1. P. 1–8.
Meza-Lucas A. et al. Comparison of DOT-ELISA and Standard-ELISA for Detection of the Vibrio cholerae Toxin in Culture Supernatants of Bacteria Iso-lated from Human and Environmental Samples // Indian J Microbiol. 2016. Vol. 56, № 3. P. 379–382.
Sack D.A. et al. Microtiter ganglioside enzymelinked immunosorbent assay for Vibrio and Escherichia coli heat labile enterotoxins and antitoxins // J. Clin. Microbiol. 1980. Vol. 11, № 1. P. 25–45.
Sathyamoorthy V. et al. Purification and characterization of a cytotonic protein expressed In vitro by the live cholera vaccine candidate CVD 103-HgR // Infect. Immun. 2000. Vol. 68, № 10. P. 6062–6065.
Tuteja U. et al. Simultaneous direct detection of tox-igenic and non-toxigenic Vibrio cholerae from rectal swabs and environmental samples by sandwich ELISA //J. Med. Microbiol. 2007. Vol. 56, № 10. P. 1340–1345.
Wilia K. et al. Purification and characterization of novel toxin producend by Vibrio cholera O1 // In-fect. Immun. 1999. Vol. 67, № 10. P. 5215–5222.
Yamasaki E. et al. Detection of Cholera Toxin by an Immunochromatographic Test Strip // Methods Mol. Biol. 2017. Vol. 1600. P. 1–7. doi: 10.1007/978-1-4939-6958-6_1.
Yamasaki E. et al. Development of an immunochromatographic test strip for detection of cholera toxin // Biomed Res Int. 2013. doi: 10.1155/2013/679038. Epub 2013 Nov 7.