Межмикробные взаимодействия в бактериально-грибковых ассоциациях

##plugins.themes.bootstrap3.article.main##

Марина Викторовна Николенко
Дарья Сергеевна Сивкова
Наталья Викторовна Барышникова
Лидия Валерьевна Сорогина

Аннотация

Одним из факторов, способствующих росту заболеваемости микозами, является образование межмикробных ассоциаций с условно-патогенной микробиотой. Изменение баланса в таких сообществах может приводить к появлению других сопутствующих заболеваний. Влияние микроорганизмов друг на друга происходит посредством сигнальных молекул и экзометаболитов. Сложные бактериально-грибковые ассоциации возбудителей гнойно-воспалительных инфекций труднее поддаются антимикробной терапии и приводят к более тяжелому клиническому течению или летальному исходу. В данном обзоре рассмотрены особенности бактериально-грибковых взаимодействий Candida sрp., Aspergillus spp., Cryptococcus spр. По литературным данным, решающую роль в вирулентной активности грибов в бактериально-грибковых ассоциациях играет видовой состав ассоциантов, участвующих в развитии патологического процесса. Кроме того, необходимо учитывать количественное соотношение микроорганизмов, а также степень вирулентности грибов, которая значительно увеличивается под воздействием метаболитов бактерий-ассоциантов. Поэтому дальнейшее изучение грибково-бактериальных ассоциаций необходимо для понимания фундаментальных вопросов, связанных с эволюцией микробной вирулентности, устойчивости к противомикробным препаратам. Взаимодействия в исследуемых бактериально-грибковых ассоциациях очень динамичны и разнообразны. Характер взаимоотношений микроорганизмов влияет не только на выживание, но и на вирулентность микробных компонентов.

##plugins.themes.bootstrap3.article.details##

Как цитировать
Николенко, М. В. ., Сивкова, Д. С. ., Барышникова, Н. В., & Сорогина, Л. В. . (2024). Межмикробные взаимодействия в бактериально-грибковых ассоциациях. Вестник Пермского университета. Серия Биология, (3), 300‒308. https://doi.org/10.17072/1994-9952-2024-3-300-308
Раздел
Микробиология
Биографии авторов

Марина Викторовна Николенко, Тюменский государственный медицинский университет, Тюмень, Россия

Д-р биол. наук, доцент, профессор кафедры микробиологии, заведующий лаборатории микробиома, регенеративной медицины и клеточных технологий

Дарья Сергеевна Сивкова, Тюменский государственный медицинский университет, Тюмень, Россия

Ассистент кафедры микробиологии, м.н.с. лаборатории микробиома, регенеративной медицины и клеточных технологий

Наталья Викторовна Барышникова, Тюменский государственный медицинский университет, Тюмень, Россия

Старший преподаватель кафедры микробиологии

Лидия Валерьевна Сорогина, Тюменский государственный медицинский университет, Тюмень, Россия

Студент 4 курса Института клинической медицины

Библиографические ссылки

Алыбаева А.Ж., Олейникова Е.А., Елубаева М.Е. Межмикробные взаимодействия в бактериально-грибковых ассоциациях условно-патогенных микроорганизмов // Вестник Науки и Творчества. 2020. № 7(55). С. 19‒25.

Шаталова Е.В., Парахина О.В., Летова Ю.С. Персистентный потенциал значимых возбудителей нозокомиальных инфекций в условиях ассоциации с грибами рода Candida // Проблемы медицинской микологии. 2019. № 3. С. 46‒48.

Abdulkareem A.F. et al. Fungal serotype-specific differences in bacterial-yeast interactions // Virulence. 2015. Vol. 6(6). P. 652‒657.

Abisado R.G. et al. Bacterial quorum sensing and microbial community interactions // mBio. 2018. Vol. 9(3). Art. e02331-17.

Ashrit P. et al. Polymicrobial biofilm dynamics of multidrug-resistant Candida albicans and ampicillin-resistant Escherichia coli and antimicrobial inhibition by aqueous garlic extract // Antibiotics. 2022. Vol. 11. Art. 573.

Baldewijns S. et al. The role of fatty acid metabolites in vaginal health and disease: Application to candid-iasis // Front. Microbiol. 2021. Vol. 12. Art. 705779.

Balhara M. et al. An anti-Aspergillus protein from Escherichia coli DH5α: utative inhibitor of siderophore biosynthesis in Aspergillus fumigatus // Mycoses. 2014. Vol. 57(3). P. 153‒162.

Belvoncikova P. et al. The human mycobiome: Colonization, composition and the role in health and dis-eas // J. Fungi. 2022. Vol. 8. Art. 1046.

Bose S. et al. Escherichia coli, but not Staphylococcus aureus, functions as a chelating agent that exhibits antifungal activity against the pathogenic yeast Candida albicans // J. Fungi. 2023. Vol. 9(3). Art. 286.

Boutin R.C. et al. Bacterial-fungal interactions in the neonatal gut influence asthma outcomes later in life // Elife. 2021. Vol. 10. Art. e67740.

Bratburd J.R. et al. Gut microbial and metabolic responses to Salmonella enterica serovar typhimurium and Candida albicans // mBio. 2018. Vol. 9(6). Art. e02032-18.

Briard B., Heddergott C., Latgé J.P. Volatile compounds emitted by Pseudomonas aeruginosa stimulate growth of the fungal pathogen Aspergillus fumigatus // mBio. 2016. Vol. 7(2). Art. e00219.

d'Enfert C. et al. The impact of the fungus-host-microbiota interplay upon Candida albicans infections: Current knowledge and new perspectives // FEMS Microbiol. Rev. 2021. Vol. 45(3). Art. fuaa060.

Fox E.P. et al. Anaerobic bacteria grow within Candida albicans biofilms and induce biofilm formation in suspension cultures // Curr. Biol. 2014. Vol. 24(20). P. 2411‒2416.

Hattab S., Dagher A.M., Wheeler R.T. Pseudomonas synergizes with fluconazole against Candida during treatment of polymicrobial infection // Infect Immun. 2022. Vol. 90(4). Art. e0062621.

He J. et al. RNA-seq reveals enhanced sugar metabolism in Streptococcus mutans co-cultured with Can-dida albicans within mixed-species biofilms // Front. Microbiol. 2017. Vol. 8. Art. 1036.

Heisel T. et al. Bacterial, fungal, and interkingdom microbiome features of exclusively breastfeeding dy-ads are associated with infant age, antibiotic exposure, and birth mode // Front. Microbiol. 2022. Vol. 13. Art. 1050574.

Hu Y. et al. Staphylococcus aureus synergized with Candida albicans to increase the pathogenesis and drug resistance in cutaneous abscess and peritonitis murine models // Pathogens. 2021. Vol. 10. Art. 1036.

Ikeda R. Apoptosis-like cell death of Cryptococcus neoformans mediated by Staphylococcus aureus contact. Med. Mycol. J. Vol. 54(1) (2013): pp. 49-52.

Ikeda R. et al. Contribution of the mannan backbone of cryptococcal glucuronoxylomannan and a gly-colytic enzyme of Staphylococcus aureus to contact-mediated killing of Cryptococcus neoformans // J. Bacteri-ol. 2007. Vol. 189(13). P. 4815‒4826.

Kapitan M. et al. Fungi as part of the microbiota and interactions with intestinal bacteria // Curr. Top. Microbiol. Immunol. 2019. Vol. 422. P. 265‒301.

Kim J.Y. Human fungal pathogens: Why should we learn? // J. Microbiol. 2016 Vol. 54(3). P. 145‒148.

Köhler J.R. et al. Fungi that infect humans // Microbiol. Spectr. 2017. Vol. 5(3). 10.1128/microbiolspec.funk-0014-2016.

Krishnamoorthy A.L. et al. Interactions between Candida albicans and Enterococcus faecalis in an or-ganotypic oral epithelial model // Microorganisms. 2020. Vol. 8. Art. 1771.

Krüger W. et al. Fungal-bacterial interactions in health and disease // Pathogens. 2019. Vol. 8(2). Art. 70.

Kumari A., Singh R. Medically important interactions of staphylococci with pathogenic fungi // Future Microbiol. 2019. Vol. 14. P. 1159–1170.

Lai G.C., Tan T.G., Pavelka N. The mammalian mycobiome: A complex system in a dynamic relation-ship with the host // Wiley Interdiscip. Rev. Syst. Biol. Med. 2019. Vol. 11(1). Art. e1438.

Little W., Black C., Smith A.C. Clinical implications of polymicrobial synergism effects on antimicrobial susceptibility // Pathogens. 2021. Vol. 10(2). Art. 144.

Lueyar T.K. et al. Dynamic interactions between Candida albicans and different streptococcal species in a multispecies oral biofilm // Microbiologyopen. 2023. Vol. 12(5). Art. e1381.

Maas E., Penders J., Venema K. Studying fungal-bacterial relationships in the human gut using an in vitro model (TIM-2) // J. Fungi. 2023 Vol. 9. Art. 174.

Martins-Santana L. et al. Addressing microbial resistance worldwide: Challenges over controlling life-threatening fungal infections // Pathogens. 2023. Vol. 12. Art. 293.

Mayer F.L., Kronstad J.W. Disarming Fungal pathogens: Bacillus safensis inhibits virulence factor pro-duction and biofilm formation by Cryptococcus neoformans and Candida albicans // mBio. 2017. Vol. 8(5). Art. e01537-17.

Mayer F.L., Kronstad J.W. The spectrum of interactions between Cryptococcus neoformans and bacteria // J. Fungi. 2019. Vol. 5(2). Art. 31.

Metwalli K.H. et al. Streptococcus mutans, Candida albicans, and the human mouth: a sticky situation // PLoS Pathog. 2013. Vol. 9(10). Art. e1003616.

Mishra K., Bukavina L., Ghannoum M. Symbiosis and dysbiosis of the human mycobiome // Front. Mi-crobiol. 2021. Vol. 12. Art. 636131.

Mogavero S. et al. Enemies and brothers in arms: Candida albicans and gram-positive bacteria // Cell Microbiol. 2016. Vol. 18(12). P. 1709–1715.

Nogueira F. et al. Pathogenetic impact of bacterial-fungal interactions // Microorganisms. 2019. Vol. 7(10). Art. 459.

Oliveira M. et al. Clinical manifestations of human exposure to fungi // J. Fungi. 2023. Vol. 9(3). Art. 381.

Palmieri F. et al. Recent advances in fungal infections: From lung ecology to therapeutic strategies with a focus on Aspergillus spp. // Front. Med. 2022. Vol. 9. Art. 832510.

Parolin C. et al. Lactobacillus biofilms influence anti-Candida activity // Front. Microbiol. 2021. Vol. 12. Art. 750368.

Pohl C.H. Competition for iron during polymicrobial infections may Increase antifungal drug susceptibil-ity-Hhw will it impact treatment options? // Infect. Immun. 2022. Vol. 90(4). Art. e0005722.

Rodrigues M.E., Gomes F., Rodrigues C.F. Candida spp. Bacteria mixed biofilms // J. Fungi. 2020. Vol. 6(1). Art. 5.

Sam Q.H., Chang M.W., Chai L.Y. The fungal mycobiome and its interaction with gut bacteria in the host // Int. J. Mol. Sci. 2017. Vol. 18(2). Art. 330.

Santus W., Devlin J.R., Behnsen J. Crossing kingdoms: How the mycobiota and fungal-bacterial interac-tions impact host health and disease // Infect Immun. 2021. Vol. 89(4). Art. e00648-20.

Sharma A. et al. Associations between fungal and bacterial microbiota of airways and asthma endo-types// J. Allergy Clin. Immunol. 2019. Vol. 144(5). P. 1214–1227. Art. e7.

Sztukowska M.N. et al. Community development between Porphyromonas gingivalis and Candida al-bicans mediated by InlJ and Als3 // mBio. 2018. Vol. 9(2). Art. e00202-18.

Tan X. et al. Candida albicans airway colonization facilitates subsequent Acinetobacter baumannii pneumonia in a rat model // Antimicrob. Agents Chemother. 2016. Vol. 60(6). P. 3348–3354.

Todd O.A., Peters B.M. Candida albicans and Staphylococcus aureus pathogenicity and polymicrobial interactions: Lessons beyond Koch’s postulates // J. Fungi. 2019. Vol. 5. Art. 81.

van Leeuwen P.T. et al. Interspecies interactions between Clostridium difficile and Candida albicans // mSphere. 2016. Vol. 1(6). Art. e00187-16.

Wang F. et al. Interactions between invasive fungi and symbiotic bacteria // World J. Microbiol. Biotech-nol. 2020. Vol. 36(9). Art. 137.

Ward T.L. et al. Development of the human mycobiome over the first month of life and across body sites // mSystems. 2018. Vol. 3(3). Art. e00140-17.