ИММОБИЛИЗАЦИЯ КЛЕТОК НИТРИЛГИДРОЛИЗУЮЩИХ БАКТЕРИЙ RHODOCOCCUS ERYTHROPOLIS 4-1 И ALCALIGENES FAECALIS 2 С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ТЕРМОТРОПНЫХ И ИОНОТРОПНЫХ ГЕЛЕЙ

##plugins.themes.bootstrap3.article.main##

Елена Михайловна Мочалова
Юлия Геннадьевна Максимова

Аннотация

Клетки амидазосодержащих бактерий штаммов Rhodococcus erythropolis 4-1 и Alcaligenes faecalis 2 были иммобилизованы с использованием таких носителей, как альгинат бария, агароза, хитозан и κ-каррагинан. Цель работы заключалась в изучении влияния методов иммобилизации бактериальных клеток на операционную стабильность биокатализатора. Определено, что наилучшим материалом носителя для стабильной работы биокатализатора является агароза. Наибольшее количество акриловой кислоты было получено при многоцикловой трансформации акриламида иммобилизованными клетками A. faecalis 2.

##plugins.themes.bootstrap3.article.details##

Как цитировать
Мочалова, Е. М., & Максимова, Ю. Г. (2020). ИММОБИЛИЗАЦИЯ КЛЕТОК НИТРИЛГИДРОЛИЗУЮЩИХ БАКТЕРИЙ RHODOCOCCUS ERYTHROPOLIS 4-1 И ALCALIGENES FAECALIS 2 С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ТЕРМОТРОПНЫХ И ИОНОТРОПНЫХ ГЕЛЕЙ. Вестник Пермского университета. Серия Биология, (1), 26–32. извлечено от http://press.psu.ru/index.php/bio/article/view/3630
Раздел
Микробиология
Биографии авторов

Елена Михайловна Мочалова, ФГБОУВО «Пермский государственный национальный исследовательский университет»

Студент

Юлия Геннадьевна Максимова, ФГБУН Институт экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН ФГБОУВО «Пермский государственный национальный исследовательский университет»

Доктор биологических наук, ведущий научный сотрудник лаборатории молекулярной микробиологии и биотехнологииПрофессор кафедры микробиологии и иммунологии

Библиографические ссылки

Дебабов В.Г., Яненко А.С. Биокаталитический гидролиз нитрилов // Обзорный журнал по химии. 2011. Т. 1, № 4. С. 376–394.

Демаков В.А. и др. Бактерии активного ила биологических очистных сооружений, трансформирующие цианопиридины и амиды пиридинкарбоновых кислот // Микробиология. 2015. Т. 84, № 3. С. 369–378.

Максимова Ю.Г. и др. Трансформация амидов адгезированными клетками родококков, обладающими амидазной активностью // Прикладная биохимия и микробиология. 2015. Т. 51, № 1. С. 53–58.

Максимов А.Ю., Максимова Ю.Г., Демаков В.А. Гидролиз акрилонитрила клетками нитрилути-лизирующих бактерий Rhodococcus ruber gt1 и Pseudomonas fluorescens C2, иммобилизованными в структуре геля агарозы // Вестник Пермского ун-та. 2009. Вып. 10(36) Биология. С. 115–118.

Махсумханов А.А. и др. Скрининг коллекционных штаммов бактерий по нитрилгидратазной активности // Биотехнология: состояние и перспективы развития. 2015. С. 375–377.

Павлова Ю.А., Неустроева А.Н., Максимов А.Ю. Сравнительный анализ последовательностей генов амидаз почвенных актинобактерий рода Rhodococcus // Известия Самарского научного центра Российской академии наук. 2011. Т. 13, № 5(3). С. 272–276.

Полтавская С.В. и др. Разработка и внедрение биокаталитического способа получения акри-ловой кислоты. I. Выделение штамма Alcaligenes denitrificans, трансформирующего акрилонитрил в акрилат аммония. Оптимизация среды культивирования // Биотехнология. 2004. № 1. С. 62–70.

Сазыкина М.А., Мирина Е.А., Сазыкин И.С. Использование биосенсоров для детекции антропогенного загрязнения природных вод // Вода: Химия и Экология. 2015. № 10. С. 64–74.

Chand D. et al. Treatment of simulated wastewater containing toxic amides by immobilized Rhodo-coccus rhodochrous NHB-2 using a highly compact 5-stage plug flow reactor // World J. Micro-biol. Biotechnol. 2004. Vol. 20. P. 679–686.

Duda-Chodak A. et al. A review of the interactions be-tween acrylamide, microorganisms and food components // Food Funct. 2016. Vol. 7(3). P. 1282–1295.

Eş I., Vieira J.D.G., Amaral A.C. Principles, techniques, and applications of biocatalyst immobilization for industrial application // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2015. Vol. 99(5). P. 2065–2082.

Fleming D.L. Evaluating bacterial cell immobilization matrices for use in a biosensor. 2004.

Kamal A. et al. Bioconversion of acrylonitrile to acrylic acid from Rhodococcus ruber AKSH-84 // J. Microbiol. Biotechnol. 2011. Vol. 21(1). P. 37–42.

Michelini E., Roda A. Staying alive: new perspectives on cell immobilization for biosensing purposes // Anal. Bioanal. Chem. 2012. Vol. 402(5). P. 1785–1797.

Sharma M., Sharma N.N., Bhalla T.C. Amidases: versatile enzymes in nature // Reviews in Environmental Science and Bio/Technology. 2009. Vol. 8. P. 343–366.

Sjahrir F. et al. Biotransformation of acrylonitrile using immobilized cells of Rhodococcus UKMP-5M as biocatalyst // Indian Journal of Fundamental and Applied Life Sciences. 2016. Vol. 6(1). P. 58–67.

Silva N. et al. Biosensor for acrylamide based on an ion-selective electrode using whole cells of Pseudomonas aeruginosa containing amidase activity // Biocatalysis and Biotransformation. 2009. Vol. 27(2). P. 143–151.

Tepe Y. Acrylamide in surface and drinking water // Acrylamide in Food. 2016. P. 275–293.

Wang Y.S. et al. Enantioselective hydrolysis of (R)-2,2-dimethylcyclopropane carboxamide by immobilized cells of an R-amidase-producing bacterium, Delftia tsuruhatensis CCTCC M 205114, on an alginate capsule carrier // J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 2010. Vol. 37. P. 503–510.

Наиболее читаемые статьи этого автора (авторов)