Анализ генетического разнообразия, структуры и дифференциации популяций Pinus sylvestris L. на Урале
##plugins.themes.bootstrap3.article.main##
Аннотация
##plugins.themes.bootstrap3.article.details##
Лицензионный договор на право использования научного произведения в научных журналах, учредителем которых является Пермский государственный национальный исследовательский университет
Текст Договора размещен на сайте Пермского государственного национального исследовательского университета http://www.psu.ru/, а также его можно получить по электронной почте в «Отделе научных периодических и продолжающихся изданий ПГНИУ»: YakshnaN@psu.ru или в редакциях научных журналов ПГНИУ.
Библиографические ссылки
Боронникова С.В. и др. Молекулярно-генетическая идентификация в лесном хозяйстве с использо-ванием геномных технологий // Бюллетень науки и практики. 2018. Т. 4, № 7. С. 26–33.
Видякин А.И. и др. Генетическая изменчивость, структура и дифференциация популяций сосны обыкновенной (Pinus sylvestris L.) на северо-востоке Русской равнины по данным молекулярно-генетического анализа // Генетика. 2015. Т. 51, № 12. С. 1401–1409.
Видякин А.И. и др. Распространение гаплотипов митохондриальной ДНК в популяциях сосны обыкновенной (Pinus sylvestris L.) на севере Европейской России // Генетика. 2012. Т. 48, № 12. С. 1440–1444.
Потокина Е. К., Александрова Т.Г. Коэффициенты генетической оригинальности образцов коллек-ции вики посевной (Vicia sativa L.) по результатам молекулярного маркирования // Генетика. 2008. Т. 44, № 11. С. 1508–1516
Пришнивская Я.В. и др. Внутривидовое генетическое разнообразие популяций двух видов древес-ных растений Пермского края // Бюллетень науки и практики. 2019. Т. 5, № 4. С. 58–68.
Рябухина М.В. и др. Генетическое разнообразие популяций сосны обыкновенной Pinus sylvestris L. // Теоретическая и прикладная экология. 2019. № 3. С. 66–71.
Санников С.Н., Петрова И.В. Филогеногеография и генотаксономия популяций вида Pinus sylvestris L. // Экология. 2012. № 4. С. 252–260.
Санников С.Н. и др. Выявление системы плейстоценовых рефугиумов Pinus sylvestris L. в южной маргинальной зоне ареала // Экология. 2014. № 3. С. 174–181.
Санников С.Н. и др. Поиск и выявление системы плейстоценовых рефугиумов вида Pinus sylvestris L. // Экология. 2020. № 3. С. 181–189.
Сбоева Я.В. Оценка состояния генофондов популяций Pinus sylvestris L. на востоке и северо-востоке Восточно-Европейской равнины // Вестник Пермского университета. Сер. Биология. 2023. Вып. 4. С. 375–384.
Чертов Н.В. и др. Молекулярно-генетическая идентификация популяций Pinus sylvestris L. и Larix sibirica Ledeb. в Пермском крае с использованием SNP-маркеров // Бюллетень науки и практики. 2020. Т. 6, № 12. С. 14–22.Art. 1278.
Dering M. et al. Tertiary remnants and Holocene colonizers: Genetic structure and phylogeography of Scots pine reveal higher genetic diversity in young boreal than in relict Mediterranean populations and a dual colonization of Fennoscandia // Diversity and distributions. 2017. Vol. 23, № 5. P. 540–555.
Floran V., Sestras R.E., Gil M.R. Organelle genetic diversity and phylogeography of Scots pine (Pinus syl-vestris L.) // Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca. 2011. Vol. 39, № 1. P. 317–322.
Frankham R. How closely does genetic diversity in finite populations conform to predictions of neutral theory? Large deficits in regions of low recombination // Heredity. 2012. Vol. 108, № 3. P. 167–178.
Hammer Ø., Harper D.A.T., Paul D.R. Past: Paleontological statistics software package for education and data analysis // Palaeontol. Electron. 2001. Vol. 4, № 1. P. 1–9.
Hebda A., Wójkiewicz B., Wachowiak W. Genetic characteristics of Scots pine in Poland and reference populations based on nuclear and chloroplast microsatellite markers // Silva Fennica. 2017. Vol. 51, № 2. P. 1–17.
Högberg P. et al. Large-scale forest girdling shows that current photosynthesis drives soil respiration // Na-ture. 2001. Vol. 411, № 683. P. 789–792.
Kalendar R., Muterko A., Boronnikova S. Retrotransposable elements: DNA fingerprinting and the as-sessment of genetic diversity // Methods Mol. Biol. 2021. Vol. 2222. P. 263–286.
Kalendar R. et al. Palindromic sequence-targeted (PST) PCR: A rapid and efficient method for high-throughput gene characterization and genome walking // Sci. Rep. 2019. Vol. 9, № 1. Art. 17707.
Kavaliauskas D., Danusevičius D., Baliuckas V. New insight into genetic structure and diversity of Scots pine (Pinus sylvestris L.) populations in Lithuania based on nuclear, chloroplast and mitochondrial DNA mark-ers // Forests. 2022. Vol. 13. Art. 1179.
Khanova E. et al. Genetic and selection assessment of the Scots pine (Pinus sylvestris L.) in forest seed orchards // Wood Res. 2020. Vol. 65. P. 283–292.
Kumar S. et al. Mega x: Molecular evolutionary genetics analysis across computing platforms // Mol. Bi-ol. Evol. 2018. Vol. 35, № 6. P. 1547–1549.
Lindén A. et al. Contrasting effects of increased carbon input on boreal SOM decomposition with and without presence of living root system of Pinus sylvestris L. // Plant and soil. 2014. Vol. 377. P. 145–158.
Liu X. et al. Abietic acid suppresses non-small-cell lung cancer cell growth via blocking IKKβ/NF-κB sig-naling // OncoTargets and therapy. 2019. P. 4825–4837.
Nei M. Molecular population genetics and evolution. Amsterdam: North-Holland Publishing Company, 1975. 228 p.
Nei M., Li W.H. Mathematical model for studying genetic variation in terms of restriction endonucleases // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1979. Vol. 76, № 10. P. 5269–5273.
O’Grady J.J. et al. Realistic levels of inbreeding depression strongly affect extinction risk in wild popula-tions // Biological conservation. 2006. Vol. 133, № 1. P. 42–51.
Pan Y. et al. A large and persistent carbon sink in the world’s forests // Science. 2011. Vol. 333. P. 988–993.
Pazouki L. et al. Large within-population genetic diversity of the widespread conifer Pinus sylvestris at its soil fertility limit characterized by nuclear and chloroplast microsatellite markers // European journal of forest research. 2016. Vol. 135. P. 161–177.
Peakall R.O.D., Smouse P.E. Genalex 6: Genetic analysis in Excel. Population genetic software for teach-ing and research // Mol. Ecol. Notes. 2006. Vol. 6, № 1. P. 288–295.
Rogers S.O., Bendich A.J. Extraction of DNA from milligram amounts of fresh, herbarium and mummi-fied plant tissues // Plant molecular biology. 1985. Vol. 5, № 2. P. 69–76.
Sboeva Y. et al. Genetic Diversity, Structure, and Differentiation of Pinus sylvestris L. Populations in the East European Plain and the Middle Urals // Forests. 2022. Vol. 13, № 11. Art. 1798.
Spielman D., Brook B.W., Frankham R. Most species are not driven to extinction before genetic factors impact them // Proceedings of the National Academy of Sciences. 2004. Vol. 101, № 42. P. 15261–15264.
Tóth E.G. et al. High genetic diversity and distinct origin of recently fragmented Scots pine (Pinus syl-vestris L.) populations along the Carpathians and the Pannonian Basin // Tree Genetics & Genomes. 2017. Vol. 13. P. 1–2.
Vasilyeva Y. et al. Genetic Structure, Differentiation and Originality of Pinus sylvestris L. Populations in the East of the East European Plain // Forests. 2021. Vol. 12, № 8. Art. 999.
Yeh F.C. et al. POPGENE, the Microsoft Windows-based user-friendly software for population genetic analysis of co-dominant and dominant markers and quantitative traits // Dept. Renewable Resources, Universi-ty of Alberta, Edmonton, Canada. 1996. Vol. 238. P. 1–29.
Zietkiewicz E., Rafalski A., Labuda D. Genome fingerprinting by simple sequence repeat (SSR)-anchored polymerase chain reaction amplification // Genomics. 1994. Vol. 20, № 2. P. 176–183.