ИЗУЧЕНИЕ МЕХАНИЗМОВ ПРОТИВОМИКРОБНОГО ДЕЙСТВИЯ СОЕДИНЕНИЯ (+)-EROGORGIANE

Авторы

  • Лариса/Larisa Юрьевна/Yurievna Нестерова/Nesterova ФГБУН Институт экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН
  • Александр/Alexander Георгиевич/Georgievich Ткаченко/Tkachenko ФГБУН Институт экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН; ФГБОУВО «Пермский государственный национальный исследовательский университет»
  • Ольга/Olga Николаевна/Nikolaevna Писцова/Pistsova ФГБОУВО «Пермский государственный национальный исследовательский университет»

Ключевые слова:

антибиотик, биопленки

Аннотация

Исследованы антибактериальная активность и возможные механизмы действия химически синтезированного соединения (+)-erogorgiane, аналога природного антибиотика, выделенного из морских кораллов Pseudopterogorgia elisabethae. Показано, что оно обладает бактерицидной активностью по отношению к Mycobacterium smegmatis как в логарифмической фазе роста культуры, так и в стационарной. С увеличением времени воздействия снижается концентрация, вызывающая полную гибель клеток в культуре. Эффект (+)-erogorgiane проявляется также по отношению к нерас-тущим клеткам M. smegmatis, которые являются более устойчивыми к действию антибиотиков ри-фампицина, изониазида и левофлоксацина, традиционно используемых для лечения туберкулеза. В то же время грамотрицательный микроорганизм Escherichia coli показал высокую устойчивость к данному препарату. Обнаружено концентрационно-зависимое подавление биопленкообразования М. smegmatis в присутствии (+)-erogorgiane. Ингибирующее действие оказывали как сублетальные, так и субингибиторные концентрации препарата, которые не оказывали влияние на рост культуры и не вызывали гибели клеток. С помощью атомно-силовой микроскопии установлено влияние (+)-erogorgiane на поверхностные структуры клетки: под действием сублетальных концентраций антибиотика увеличивается шероховатость клеточной поверхности. Получить мутантов, устойчивых к действию антибиотика высевом на твердую среду, содержащую препарат в высокой концентрации, не удалось.

Биографии авторов

Лариса/Larisa Юрьевна/Yurievna Нестерова/Nesterova, ФГБУН Институт экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН

Кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории адаптации микроорганизмов

Александр/Alexander Георгиевич/Georgievich Ткаченко/Tkachenko, ФГБУН Институт экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН; ФГБОУВО «Пермский государственный национальный исследовательский университет»

Доктор медицинских наук, зав. лабораторией адаптации микроорганизмов;Профессор кафедры микробиологии и иммунологии

Ольга/Olga Николаевна/Nikolaevna Писцова/Pistsova, ФГБОУВО «Пермский государственный национальный исследовательский университет»

Инженер кабинета микроскопии Rhodococcus-центра

Библиографические ссылки

Aguayo S., Bozec L. Mechanics of bacterial bells and initial iurface colonisation // Advances in Experimental Medicine and Biology. 2016. Vol. 915. P. 245-260.

Ami M., Niikawa H., Kobayashi M. Marine-derived fungal sesterterpenes, ophiobolins, inhibit biofilm formation of Mycobacterium species // Journal of Natural Medicines. 2013. Vol. 67, № 2. P. 271-275.

De Souza M. V.N. Marine natural products against tuberculosis // The Scientific World Journal. 2006. Vol. 21, №6. P. 847-861.

Kern W.V., Oethinger M., Jellen-Ritter A.S., Levy S.B. Non-target gene mutations in the development of fluoroquinolone resistance in Escherichia coli // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2000. Vol. 44, № 4. P. 814—820.

Leisner J.J., Jorgensen N.O., Middelboe M. Predation and selection for antibiotic resistance in natural environments // Evolutionary Applications Journal. 2016. Vol. 9, № 3. P. 427-434.

McMurry L.M., McDermott P.F., Levy S.B. Genetic evidence that InhA of Mycobacterium smegmatis is a target for triclosan // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 1999. Vol. 43, № 3. P. 711-713.

Migliori G.B., Sotgiu G., Gandhi N.R. et al. Drug resistance beyond extensively drug-resistant tuberculosis: individual patient data meta-analysis // European Respiratory Journal. 2013. Vol. 42, № 1. P. 169-179.

Sharma I.M., Petchiappan A., Chatterji D. Quorum sensing and biofilm formation in mycobacteria: role of c-di-GMP and methods to study this second messenger // International Union of Biochemistry and Molecular Biology Life. 2014. Vol. 66, № 12. P. 823-834.

Syal K., Maiti K., Naresh K. et al. Synthetic arabino-mannan glycolipids impede mycobacterial growth, sliding motility and biofilm structure // Glycoconju-gate Journal. 2016. № 4.

Telenti A., Honoré N., Bernasconi C. et al. Genotypic assessment of isoniazid and rifampin resistance in Mycobacterium tuberculosis: a blind study at reference laboratory level // Journal of Clinical Microbiology. 1997. Vol. 35, № 3. P. 719-723.

World Health Organisation. Global Tuberculosis report 2015. France, 2015. 192 p.

_______________________________________________________

Aguayo S., Bozec L. Mechanics of bacterial cells and initial surface colonization. Advances in Experimental Medicine and Biology. V. 915 (2016): pp. 245-260.

Arai M., Niikawa H., Kobayashi M. Marine-derived fungal sesterterpenes, ophiobolins, inhibit biofilm formation of Mycobacterium species. Journal of Natural Medicines. V. 67 No. 2 (2013): pp. 271-275.

De Souza M.V.N. Marine natural products against tuberculosis. The Scientific World Journal. V. 21 No. 6 (2006): pp. 847-861.

Kern W.V., Oethinger M., Jellen-Ritter A., Levy S.V. Non-target gene mutations in the development of fluoroquinolone resistance in Escherichia coli. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. V. 44 No. 4 (2000): pp. 814-820.

Leisner J.J., Jorgensen N.O., Middelboe M. Prédation and selection for antibiotic resistance in natural environments. Evolutionary Applications Journal. V. 9 No. 3 (2016): pp. 427-434.

McMurry L.M., McDermott P.F., LevyS.B. Genetic evidence that InhA of Mycobacterium smegmatis is a target for triclosan. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. V. 43 No. 3 (1999): pp. 711-713.

Migliori G.B., Sotgiu G., Gandhi N.R., Falzon D., DeRiemer К. Drug resistance beyond extensively drug-resistant tuberculosis: individual patient data meta-analysis. European Respiratory Journal. V. 42 No. 1 (2013): pp. 169-179.

Sharma I.M., Petchiappan A., Chatterji D. Quorum sensing and biofilm formation in mycobacteria: role of c-di-GMP and methods to study this second messenger. International Union of Biochemistry and Molecular Biology Life. V. 66 No. 12 (2014): pp. 823-834.

Syal K., Maiti K., Naresh K., Avaji P.G., Chatterji D., Jayaraman N. Synthetic arabinomannan glycolipids impede mycobacterial growth, sliding motility and biofilm structure. Glycoconjugate Journal. No. 4 (2016).

Telenti A., Honoré N., Bernasconi C., March J., Ortega A., Heym В., Takiff H.E., Cole S.T. Genotypic assessment of isoniazid and rifampin resistance in Mycobacterium tuberculosis: a blind study at reference laboratory level. Journal of Clinical Microbiology. V. 35 No. 3 (1997): pp. 719-723.

World Health Organisation. Global Tuberculosis report 2015. France, 2015. 192 p.

Загрузки

Опубликован

2018-10-25

Как цитировать

Нестерова/Nesterova Л. Ю., Ткаченко/Tkachenko А. Г., & Писцова/Pistsova О. Н. (2018). ИЗУЧЕНИЕ МЕХАНИЗМОВ ПРОТИВОМИКРОБНОГО ДЕЙСТВИЯ СОЕДИНЕНИЯ (+)-EROGORGIANE. Вестник Пермского университета. Серия «Биология»=Bulletin of Perm University. Biology, (4), 351–355. извлечено от http://press.psu.ru/index.php/bio/article/view/1772